二甲基甲酰胺SDS-二甲基甲酰胺对人体的危害
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液相色谱柱应该如何使用和维护?
在条件允许的情况下，最好***用与色谱柱同种填料的固相萃取柱过滤进样溶液，可以减少在色谱柱上死吸附的物质或易堵塞的大分子样品。如生物样品中的小极性的油脂类易于沉淀死吸附在C18反相色谱柱中，导致柱效降低、柱压升高。
色谱柱是液相色谱仪的核心部分，由空柱和填料组成。在使用前，需将空柱洗净并填充固定相。为防止柱污染，通常会使用一个预柱来保护主柱。反相键合相柱需要特别注意再生过程，必须先用流动相冲洗，然后用甲醇进行清洗和再生。 流动相的洗脱方式 流动相的洗脱方式包括恒溶剂脱洗法和梯度洗脱法。
保护柱一般是填有相似固定相的短柱。保护柱可以而且应该经常更换。⑥ 经常用强溶剂冲洗色谱柱，清除保留在柱内的杂质。在进行清洗时，对流路系统中流动相的置换应以相混溶的溶剂逐渐过渡，每种流动相的体积应是柱体积的20倍左右，即常规分析需要50~75ml。
第一，日常使用后就要清洗流路和柱子。第二，不同的柱子需用不同的溶剂清洗和保存。如，C8，C18等一般弱极性柱子的，先用90%的甲醇或乙腈和10%的水。
***天早上3分钟然后用流动相重新平衡色谱柱约3分钟。当柱由于装载、卸载、替换、存储等原因而移动时。，动作要轻，不能碰撞，以免柱床振动产生缝隙或通道。立柱应贴上标签，新旧分开，不要放在温度变化大的地方。液相色谱柱不使用或储存时，应封闭并储存在惰性溶剂中。
液相色谱仪使用及维护 液相色谱仪使用时要非常的注意。使用卡套柱时，两端的卡套应时刻连接在柱芯上。不管您是平衡色谱柱或是清洗，任何时候都不能将卡套取下来，否则会造成填料的流失。
急求解答:气相色谱(FID)溶剂峰峰高很低
1、如果色谱柱上有一个箭头来提醒色谱柱的流向，我觉得应该在反向使用色谱柱之前参考说明使用书，浏览生产商的网站，或与技术支持组进行商讨，以确定这是否是一个安全的举动。无论你是否将色谱柱反向使用，最好要将色谱柱同高效液相色谱检测器断开，使污染物或者颗粒留在筛板上而不流经检测池，因为这些物质会污染检测池。
2、具体情况要根据你的实验结果判断。我的建议是，先用低温把溶剂峰跑出来，然后梯度去跑四氯乙烯的色谱峰。具体情况根据试验情况再调整。
3、a.柱温太低：柱温太低，样品在柱子里停留时间就会变长，峰型自然也就不好了。b.色谱柱的类型：关于极性柱、中极性柱、非极性柱的选择问题可以在网络上仔细学习一下，如果柱子的类型没有选好，色谱峰也会有一些问题的。
4、这个其实挺正常的。因为浓度太高了。气相既然要保证主成分检出，那么溶剂峰的浓度自然会比较高。有时候就会出现拖尾的情况，这个其实比较常见。如果想要避免的话，最好是调整一下样品浓度，比如，主成分的浓度增加，然后加大分流比或者减小进样量。
5、你是说你气相里所有的色谱峰都宽，还是说，你的溶剂峰特别宽呢？如果是所有峰都很宽，一个是可以老化一下色谱柱，一个是考虑你的进样是不是不够快（这只是针对手动进样而言），再一个就是可能样品浓度太高了，可以考虑减少进样量，或者加大分流比。如果你说的是溶剂峰很宽，那是很正常的事情。
影响PCR反应效率的因素有哪些?如何有效地提高PCR反应的效率?
1、模板变性温度变性温度是决定PCR反应中双链DNA解链的温度，达不到变性温度就不会产生单链DNA模板，PCR也就不会启动。变性温度低则变性不完全，DNA双链会很快复性，因而减少产量。一般取90～95℃。样品一旦到达此温度宜迅速冷却到退火温度。
2、影响PCR反应效率的因素主要包括以下几个方面： 温度循环参数：在PCR自动热循环中，变性与退火的温度是关键因素。变性温度应设定在90～95℃，以确保双链DNA解链产生单链DNA模板。退火温度应根据引物的（G+C）%含量进行调整，以提高PCR的特异性和产量。
3、设计的引物是否是特异引物 所使用的酶是否是高保真或者是高灵敏度的酶 扩增的条件，比如退火温度，循环数。
4、引物设计是决定PCR反应成败的最重要因素。引物设计有两个主要考虑因素：特异性和扩增效率。特异性是由错配的频率决定的，特异性差的引物易产生错误的扩增产物。扩增效率是指引物以每循环增加两倍扩增产物达到理论最优的能力。遵循原则如下： 引物长度：引物的最佳长度为24或25个碱基左右。
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